МІКРОБІОЛОГІЧНИЙ СПЕКТР НАУПЛІЙ АРТЕМІЇ ЗА ДІЇ ПРОБІОТИЧНИХ ШТАМІВ МОЛОЧНОКИСЛИХ БАКТЕРІЙ РОДУ LACTOBACILLUS
DOI:
https://doi.org/10.31861/biosystems2021.02.134Ключові слова:
артемія, пробіотики, біоінкапсуляція, смертність, мікрофлораАнотація
Досліджено можливість біоінкапсуляції трьох пробіотичних штамів молочнокислих бактерій Lactobacillus casei ІМВ В-7280, L. acidophilus ІМВ В-7279 та L. delbrueckii subsp. bulgaricus ІМВ В-7281 в науплії артемії, а також проаналізовано вплив тривалості самої процедури біоінкапсуляції на мікрофлору живих кормів та показники їх смертності. Досліджувані штами лактобактерій характеризуються різною здатністю до колонізації науплій артемії. Найвищі показники обсемінення забезпечує використання L. delbrueckii, найменші – L. acidophilus. Результати мікробіологічних досліджень показали, що інтактні науплії Artemia sрр. контрольної групи були контаміновані умовно-патогенними для риб представниками родів Pseudomonas spp., Enterobacteriaceae spp., Staphylococcus spp., Streptococcus spp., а також мікроскопічними грибами Candida spp. Встановлено, що під впливом усіх трьох досліджуваних пробіотичних штамів у науплій артемії якісно змінювався мікробіологічний спектр. Зокрема, використання L. casei та L. delbrueckii достовірно зменшувало кількість усіх виявлених у контрольних груп артемій умовно-патогенних мікроорганізмів, при цьому відбувалась повна елімінація представників роду Candida. За насичення L. casei це відбувалось незалежно від тривалості проведення процедури біоінкапсуляції. Використання L. acidophilus забезпечило пригнічення розвитку Staphylococcus spp. та Pseudomonas spp. на 12 годину насичення. Незважаючи на те, що L. delbrueckii забезпечує вищий рівень колонізації науплій, L. casei забезпечує більш ефективне пригнічення розвитку умовно-патогенної мікрофлори. Застосування усіх трьох штамів лактобацил забезпечує більш ніж п’ятикратне зменшення смертності науплій артемії протягом їх 12-годинного утримання. Даний ефект може бути корисним для підтримання життєздатності кормових організмів в автоматичних годівницях при вигодовуванні ранньої молоді риб.
Посилання
Lebedev K.A., Poniakina I.D. Immunogram in clinical practice. Moscow: «Nauka», 1990.
Litvinenko L.I., Guzhenko M.V. Definition of optimal parameters for hatching of Siberian Artemia cysts. Rybnoye Khoziaystvo. 2007; 2: 90–94.
Brown D.F., Perry S.F. Methods used in the United Kingdom for the culture of micro-organisms from blood. Journal of Clinical Pathology. 1992; 45: 468-474. doi: 10.1136/jcp.45.6.468
El-Saadony M.T., Alagawany M., Patra A.K., et al. The functionality of probiotics in aquaculture: An overview. Fish Shellfish Immunol. 2021;117:36-52. doi:10.1016/j.fsi.2021.07.007
Figueiredo J., van Woesik R., Lin J., Narciso L. Artemia franciscana enrichment model — How to keep them small, rich and alive? Aquaculture. 2009;294(3-4):212-220. doi:10.1016/j.aquaculture.2009.05.007
Zhang Z, Lv J, Pan L, Zhang Y. Roles and applications of probiotic Lactobacillus strains. Appl Microbiol Biotechnol. 2018; 102 (19): 8135-8143. doi:10.1007/s00253-018-9217-9
Sharma P, Sihag R.C., Gahlawat S.K. Relative Efficacy of Two Probiotics in Controlling the Epizootic Ulcerative Syndrome Disease in Mrigal (Cirrhinus mrigala Ham.). J Fish Aquat Sci. 2013;8(2):305-322. doi:10.3923/jfas.2013.305.322
Ihsana BI, Jahangir A, Karthikeyan R. Probiotics in Brackish Water Fish Farming: A Special Focus on Encapsulated Probiotics. Biointerface Res Appl Chem. 2021;11(6):14697-14708. doi:10.33263/BRIAC116.1469714708
Dhont J, Dierckens K, Støttrup J, Van Stappen G, Wille M, Sorgeloos P. Rotifers, Artemia and copepods as live feeds for fish larvae in aquaculture. In: Advances in Aquaculture Hatchery Technology. Woodhead Publishing Limited; 2013:157-202. doi:10.1533/9780857097460.1.157
Dawood M. A. O., Koshio S., Abdel-Daim M. M. et al. Probiotic application for sustainable aquaculture. Reviews in Aquaculture. 2019; 11(3): 907–924. doi:10.1111/raq.12272
Qin C., Xie Y., Wang Y. et al. Impact of Lactobacillus casei BL23 on the host transcriptome, growth and disease resistance in larval zebrafish. Frontiers in Physiology. 2018; 9: 1245 doi:10.3389/fphys.2018.01245
